小腸（hSI）是人類重要的器官，執(zhí)行著包括消化在內的眾多功能，包括但不限于初始和選擇性屏障活動、營養(yǎng)吸收、宿主-微生物相互作用，以及宿主防御和免疫反應的調節(jié)?？诜o藥是最常見的給藥方式，許多藥物在小腸中被吸收并開始代謝。過去十年，研究者嘗試總結體內腸道復雜生理功能的各個方面，并利用人類結腸腺癌細胞系（Caco-2）以及人工膜系統(tǒng)，來建立評估藥物在小腸中的吸收和代謝的實驗模型。然而，現(xiàn)有的模型無法充分模擬hSI的功能，也無法反映藥物轉運體、藥物代謝酶和緊密連接的表達模式所扮演的重要作用。此外，這些模型中缺乏細胞色素P450酶(CYP3A4)，而hSI中最豐富的藥物代謝酶正是P450，這導致了Caco-2模型不適合研究腸道首過效應和生物利用度。近年來，原代人腸上皮細胞（hIEC）模型的發(fā)展取得了顯著進展，例如3D人體腸道類器官（hIOs）。但由于人體腸道類器官內缺乏增殖細胞群，難以將腸上皮細胞培養(yǎng)成融合的單分子層，因此從人體腸道類器官生成單層hSI模型十分困難。

鑒于此，韓國生命工學研究院的一項研究開發(fā)了一種重復性良好的兩步方法來誘導人多能干細胞分化為可擴大的hIEC祖細胞和具有功能性的hIEC單層細胞。

為了從人多功能干細胞（hPSCs）中獲得單層hSI模型，研究者建立了一種新的定向分化方案，來模擬體內腸道發(fā)育過程。該方案采用激活素A（Activin A）、表皮生長因子（EGF）、Wnt信號通路激動劑R-spondin 1和胰島素等來誘導hPSCs向hIEC祖細胞分化，并進一步分化為有功能性的hIEC。經過長時間傳代后（大于10代，培養(yǎng)大于5個月），腸細胞標記物和緊密連接分子的表達沒有明顯變化，腸上皮功能相關實驗同樣使用Transwell系統(tǒng)。

圖1｜由hPSCs分化hIECs的過程與相關表征

由于在hSI中，Wnt的抑制和Notch的激活有助于祖細胞分化為吸收前上皮細胞，研究者使用了Wnt信號抑制劑Wnt-c59和Notch信號激動劑丙戊酸(VPA)，來進一步將hIEC祖細胞分化為與體內類似的成熟且有功能的hIEC。與其他僅由吸收性腸細胞組成的小腸上皮模型相比，該系統(tǒng)可以模擬體內樣腸組織進行研究。與未成熟的hIECs相比，功能性hIECs形成了一個結構極化的單層，并觀察到了類似杯狀細胞分泌出的粘液。此外，功能性單分子層hIEC的頂表面接觸的細菌數量明顯更高，并且黏液蛋白和黏液蛋白相關基因的表達在功能性hIEC中顯著增加能夠允許腸道微生物群的持續(xù)定植。

圖2｜功能性hIECs單層模型的結構與功能表征

隨后，研究分析了各種腸道轉運體和代謝酶的表達水平，通過RNA測序與酶活性檢測，發(fā)現(xiàn)腸道堿性磷酸酶（IAP）和CYP3A4在功能性hIEC中表達量相當高，這些結果表明功能性hIEC具有藥物轉運體和藥物代謝酶活性，是評價藥物體外生物利用度所必需的。本研究使用了6種臨床藥物：美托洛爾、普萘洛爾、雙氯芬酸、雷尼替丁、呋塞米和紅霉素，進行體外藥物吸收試驗，發(fā)現(xiàn)與Caco-2模型不理想的體內外相關性相比，功能性hIEC與已公布的人體內腸道吸收數據擬合的相關性良好，說明功能性hIEC可以更好地預測人的口服生物利用度和吸收程度。

圖3｜6種臨床模型藥物在功能性hIECs與Caco-2模型上吸收的擬合結果

總而言之，此研究發(fā)明了一套可靠且完善的hIECs培養(yǎng)系統(tǒng)，可以用來產生具有接近體內功能的小腸上皮單層，以取代目前的體外模型，提供一個新的通用的藥物體外腸吸收的檢測平臺。